Все что надо для проведения эксперементов по системе CRISPR-Cas

08.07.2025

1. Основные компоненты системы CRISPR-Cas

Это ядро любого эксперимента по редактированию генома. Сегодня чаще всего используются готовые системы на основе Cas9 или Cas12a (Cpf1).

  • Фермент Cas (нуклеаза):

    • Cas9: Наиболее распространенный вариант. Требует наличия гидовой РНК (gRNA).

    • Варианты доставки:

      • Плазмидная ДНК: Кодирует белок Cas9 и gRNA. Самый дешевый, но менее эффективный метод.

      • мРНК Cas9: Синтетическая мРНК, кодирующая белок Cas9. Более высокая эффективность и скорость действия, меньше побочных эффектов, чем у плазмид.

      • Рибонуклеопротеиновый комплекс (RNP): Готовый комплекс очищенного белка Cas9 и синтетической gRNA. Золотой стандарт для большинства экспериментов.Обеспечивает最高шую эффективность, специфичность и минимальный офф-таргет эффект. Рекомендуется для работы с первичными и труднotransфекцируемыми клетками.

  • Гидовая РНК (gRNA / sgRNA):

    • Определяет специфичность системы. Это короткая РНК-последовательность, комплементарная целевой ДНК.

    • Варианты доставки:

      • Плазмидная ДНК: Кодирует последовательность для gRNA (требует экспрессии внутри клетки).

      • Синтетическая gRNA: Готовая к использованию РНК. Предпочтительный вариант при использовании с RNP-комплексом или мРНК Cas9. Обеспечивает быстрое действие и отсутствие нежелательной экспрессии.

  • Донорная матрица (для HDR-редактирования):

    • Если ваша цель — не просто разрыв ДНК (knockout), а точечное исправление или вставка гена (knock-in), необходим донорный матрикс (ODN — одноцепочечный олигонуклеотид или плазмида с гомологичными плечами). Он служит «заплаткой» для точного внесения изменений клеточными системами репарации (HDR-путем).

2. Оборудование и расходные материалы

  • Культуральная лаборатория: Полный набор для работы с клеточными культурами.

    • Ламинарный бокс (II класса биобезопасности).

    • CO₂-инкубатор.

    • Центрифуга для микропроберок и пробирок.

    • Анализатор клеток (или микроскоп с камерой для подсчета).

    • Химические реагенты: среды, PBS, трипсин, антибиотики, сыворотка.

    • Пластик: чашки, планшеты, пипетки, наконечники, пробирки.

  • Оборудование для доставки компонентов (трансфекции/трансдукции):

    • Электроporator: Наиболее универсальный и эффективный метод доставки, особенно для RNP-комплексов и трудных клеточных линий.

    • Реагенты для химической трансфекции (липофекция): Подходят для многих стандартных клеточных линий (например, HEK293, HeLa). Существуют коммерческие коктейли, оптимизированные specifically для доставки RNP-комплексов.

    • Вирусные векторы (лентивирусы, AAV): Используются для доставки CRISPR-компонентов in vivo или в труднотрансфицируемые клетки. Требуют работы в лаборатории с соответствующим уровнем биобезопасности.

  • Оборудование для анализа результатов:

    • ПЦР-амплификатор: Необходим для амплификации целевого локуса.

    • Электрофорезная система (капиллярная или гелевая): Для первичного анализа эффективности редактирования (например, с помощью T7E1 или Surveyor assays).

    • Секвенатор: Обязателен для подтверждения редактирования. Sanger-секвенирование ПЦР-продуктов с последующим анализом хроматограмм (например, в программе ICE Synthego) или NGS для глубокого анализа и проверки на офф-таргет эффекты.

3. Программное обеспечение и информационные ресурсы

  • Дизайн gRNA: Критически важный этап. Необходимо использовать специализированные онлайн-инструменты для подбора специфичных и эффективных гидов с минимальным офф-таргет потенциалом.

    • CRISPRscan.org (для работы in vivo)

    • Benchling (интегрированная платформа для дизайна и анализа)

    • Инструменты от Broad Institute (GPP Portal)

    • CRISPRpick, ChopChop

  • Анализ данных секвенирования:

    • TIDE (Tracking of Indels by Decomposition) / ICE (Inference of CRISPR Edits): Веб-инструменты для анализа хроматограмм Sanger-секвенирования и расчета эффективности редактирования.

    • Программы для анализа данных NGS (CRISPResso, Cas-Analyzer).

4. Контроль качества и валидация

  • Контроль эффективности доставки: Использование флуоресцентно-меченых синтетических gRNA для отслеживания трансфекции под микроскопом или проточным цитофлуориметром.

  • Оценка эффективности редактирования:

    • Первичный скрининг: T7E1/Surveyor assay, ПЦР с анализом длины ампликонов.

    • Подтверждение: Клонирование ПЦР-продуктов и секвенирование колоний или прямое секвенирование ПЦР-продуктов (Sanger, NGS).

  • Проверка на офф-таргет эффекты: Анализ in silico (прогнозирование с помощью ПО) и экспериментальная валидация наиболее вероятных офф-таргет сайтов с помощью ПЦР и секвенирования или методом GUIDE-seq.

Получите бесплатную консультацию
Ранее вы смотрели
Ваша корзина пуста
Исправить это просто: выберите в каталоге интересующий
товар и нажмите кнопку «В корзину».
Перейти в каталог
К сожалению, раздел пуст
Исправить это просто: выберите в каталоге интересующий
товар и нажмите кнопку «В избранное».
Перейти в каталог